联合检测ANXA2和RACK1在肝细胞肝癌预后判断中的价值

邱婷婷, 周梦, 肖明兵, 瞿利帅, 倪润洲, 刘金霞

邱婷婷, 周梦, 肖明兵, 瞿利帅, 倪润洲, 刘金霞. 联合检测ANXA2和RACK1在肝细胞肝癌预后判断中的价值[J]. 中国肿瘤临床, 2022, 49(6): 286-292. DOI: 10.12354/j.issn.1000-8179.2022.20211761
引用本文: 邱婷婷, 周梦, 肖明兵, 瞿利帅, 倪润洲, 刘金霞. 联合检测ANXA2和RACK1在肝细胞肝癌预后判断中的价值[J]. 中国肿瘤临床, 2022, 49(6): 286-292. DOI: 10.12354/j.issn.1000-8179.2022.20211761
Tingting Qiu, Meng Zhou, Mingbing Xiao, Lishuai Qu, Runzhou Ni, Jinxia Liu. Value of combined detection of annexin A2 and receptor for activated C kinase 1 in prognosis of hepatocellular carcinoma[J]. CHINESE JOURNAL OF CLINICAL ONCOLOGY, 2022, 49(6): 286-292. DOI: 10.12354/j.issn.1000-8179.2022.20211761
Citation: Tingting Qiu, Meng Zhou, Mingbing Xiao, Lishuai Qu, Runzhou Ni, Jinxia Liu. Value of combined detection of annexin A2 and receptor for activated C kinase 1 in prognosis of hepatocellular carcinoma[J]. CHINESE JOURNAL OF CLINICAL ONCOLOGY, 2022, 49(6): 286-292. DOI: 10.12354/j.issn.1000-8179.2022.20211761

联合检测ANXA2和RACK1在肝细胞肝癌预后判断中的价值

基金项目: 本文课题受国家自然科学基金(编号:81401985)、江苏省六大人才高峰资助项目(编号:WSN-057)、南通市社会民生科技项目(编号:MS12021073)和中国博士后科学基金新冠肺炎疫情防控专项(编号:2020M670039ZX)资助
详细信息
    作者简介:

    邱婷婷: 专业方向为消化系统疾病诊治

    通讯作者:

    刘金霞  liujinxia@ntu.edu.cn

Value of combined detection of annexin A2 and receptor for activated C kinase 1 in prognosis of hepatocellular carcinoma

Funds: This work was supported by the National Nature Science Foundation of China (No. 81401985), Six Talent Peaks Project in Jiangsu Province under Grant nos (No. WSN-057), Nantong Social Livelihood Science and Technology Projects (No. MS12021073) and the Novel Coronavirus Pneumonia Fund for China's Post Doctoral Fund (No. 2020M670039ZX)
More Information
  • 摘要:
      目的  联合检测膜联蛋白A2(ANXA2)和活化的蛋白激酶C的受体1(RACK1)在肝癌及癌旁组织中的表达及其预后价值。
      方法  收集2010年1月至2011年12月南通大学附属医院行肝癌根治性切除术100例患者的石蜡标本。通过免疫组织化学染色检测ANXA2和RACK1在肝细胞癌中的表达,分析其与生存和复发时间的相关性,探讨两者联合表达在肝细胞癌中的预后价值。
      结果  免疫组织化学结果提示ANXA2与RACK1的联合表达水平与肿瘤分化、TNM分期和脉管癌栓有关(均P<0.05)。在100例组织中,ANXA2在HCC组织中的表达(42%)明显高于邻近正常组织(11%,P<0.001),RACK1在HCC组织中的表达(38%)明显高于邻近正常组织(18%,P=0.002)。ANXA2 表达强度与 AFP(P=0.027)、肿瘤大小(P=0.018)、脉管癌栓(P=0.035)、肿瘤分化(P<0.001)和 TNM 分期(P<0.001)有相关性,与性别、年龄、肿瘤数目、HBV 感染、Child 分级和肝硬化等因素无相关(均P>0.05)。RACK1 表达与肿瘤分化(P<0.001)、脉管癌栓(P=0.009)和 TNM 分期(P<0.001)有关,与其他临床特征无关(均P>0.05);双变量Kendall检验结果显示,ANXA2和RACK1的表达水平存在显著正相关(Z=0.419,P<0.01)。ANXA2或RACK1的高表达提示有早期复发的倾向,在 12 例早期复发患者(复发时间<12 个月)中, 11 例患者高表达ANXA2(11/12,91.7%)和RACK1(11/12,91.7%)。Kaplan-Meier分析结果提示,ANXA2-/RACK1-患者的总生存率显著高于ANXA2+/RACK1-、ANXA2-/RACK1+和ANXA2+/RACK1+患者;ANXA2+/RACK1+患者较ANXA2+/RACK1-、ANXA2-/RACK1+和ANAX2-/RACK1-患者更易早期复发。
      结论  ANXA2和RACK1是预测肝癌患者生存和复发的独立因素,两者联合检测更加有助于预后的判断。
    Abstract:
      Objective  To investigate the expression levels of annexin A2 (ANXA2) and receptor for activated C kinase 1 (RACK1) in hepatocellular carcinoma (HCC) tissues and adjacent normal tissues, to explore the relationships between ANXA2 and RACK1 expression levels and clinicopathological characteristics, and to identify the prognostic value of combined ANXA2 and RACK1 detection in HCC patients.
      Methods  Paraffin-embedded specimens of HCC were collected from 100 patients who underwent radical resection of HCC in The Affiliated Hospital of Nantong University from January 2010 to December 2011. Immunohistochemical staining was used to determine the expression levels of ANXA2 and RACK1. The correlations between ANXA2 and RACK1 levels and survival and recurrence time were analyzed, and the prognostic value of their combined expression levels in HCC was evaluated.
      Results  Immunohistochemical results suggested that the combined expression levels of ANXA2 and RACK1 were related to tumor differentiation, TNM stage and vascular tumor thrombus (P<0.05). Among the 100 tissue samples examined, the expression level of ANXA2 was significantly higher in HCC tissues (42%) than that in adjacent normal tissues (11%, P<0.001), while the expression level of RACK1 was significantly higher in HCC tissues (38%) than that in adjacent normal tissues (18%, P=0.002). The level of ANXA2 expression was correlated with alpha-fetoprotein (AFP) levels (P=0.027), tumor size (P=0.018), the presence of a vascular tumor thrombus (P = 0.035), tumor differentiation (P<0.001), and TNM stage (P<0.001). Sex, age, tumor number, hepatitis B virus (HBV) infection, Child–Pugh score, and the presence of liver cirrhosis (P>0.05) were not correlated with ANXA2 levels. The level of RACK1 expression was correlated with tumor differentiation (P<0.001), the presence of a vascular tumor thrombus (P=0.009), and TNM stage (P<0.001), but not with the other clinical features evaluated (P>0.05). A bivariate Kendall test showed a significant positive correlation between the expression levels of ANXA2 and RACK1 (Z=0.419, P<0.01). The overexpression of ANXA2 or RACK1 indicated a tendency for early relapse. Among 12 patients with early relapse (relapse time <12 months), 11 (91.7%) had high expression levels of both ANXA2 and RACK1. Kaplan–Meier analysis suggested that ANXA2-/RACK1- patients had significantly higher overall survival rates than ANXA2+/RACK1-, ANXA2-/RACK1+, and ANXA2+/RACK1+ patients. Moreover, early relapse was more likely in ANXA2+/RACK1+ patients than ANXA2+/RACK1-, ANXA2-/RACK1+, and ANAX2-/RACK1- patients.
      Conclusions  The combined detection of ANXA2 and RACK1 expression level is an independent predictive factor for survival and recurrence in patients with HCC. Combined analysis of the two proteins is more informative than individual analyses for predicting prognosis.
  • 肝细胞肝癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是世界上最常见的恶性肿瘤之一,是癌症死亡的第三大原因[1]。多数患者早期无明显症状且缺乏有效的筛查方法,发现时大多已失去手术机会。肝癌患者高死亡率和预后不良的现状与缺乏早期筛查手段、晚期治疗靶标密切相关[2],因此,迫切需要研发新型生物标志物用于肝癌的诊断和治疗预后评估。

    ANXA2 是一种钙依赖性磷脂结合蛋白,在癌症的进展中发挥极其重要的作用[3]。ANXA2可通过与t-Pa和S100A10结合激活纤溶系统,增强肿瘤的侵袭性[4]。此外,ANXA2在肿瘤微环境中通过调节与细胞运动相关的微结构的重塑,在肿瘤转移中发挥重要作用[5]。ANXA2也可以通过促进新生血管的形成影响肿瘤的进展[6]。ANXA2有助于维持肿瘤细胞的恶性表型,促进肿瘤细胞的增殖、转移和侵袭。

    RACK1是Trp-Asp (tryptophane-asparagine)重复序列家族的成员,是一种可影响肿瘤进展的多功能支架蛋白,广泛存在于各种真核生物中[7-8]。RACK1可通过促进 ANXA2 Tyr23(tyrosine 23)磷酸化增强耐药性乳腺癌细胞的迁移和侵袭能力[9]。迄今为止,联合检测ANXA2 和 RACK1在HCC组织中的表达及意义鲜见报道。

    本研究 ANXA2 和 RACK1 在HCC及癌旁组织中的表达水平,探讨两者的表达与患者临床特征及预后的关系,并进一步分析联合检测在HCC患者预后判断中的价值。

    收集自2010年1月至2011年12月在南通大学附属医院行HCC根治性切除术100例患者的HCC石蜡标本。所有患者术前未进行化疗、放疗或者其他治疗,且手术切除标本病理诊断明确,具有完整的临床病理资料,切缘均>1 cm。100例患者中,男性82例,女性18例;年龄28~64 岁,中位年龄 53 岁。根据 Edmondson 分级系统,将肿瘤的组织学分级分为高分化、中分化和低分化[10]。肿瘤-淋巴结转移(TNM)分期根据2010 AJCC HCC 分期系统定义[11]。肝细胞癌患者的临床和病理诊断符合美国肝脏病学会的诊断标准[12]

    将HCC及癌旁组织石蜡包埋制成组织芯片,经过烘片、脱蜡和水化后,浸泡在枸橼酸钠缓冲溶液中,高压锅热修复约10 min,冷却至室温后,PBS 冲洗后滴加封闭液,室温 2 h。将组织芯片与小鼠一抗ANXA2 抗体(1∶1 000,购自美国Santa公司)RACK1抗体(1∶50,购自美国Abcam公司)在4℃孵育过夜。用 PBS 洗涤后,以 1∶2 500 的稀释度滴加二抗,孵育 15 min,并用 PBS 洗涤后DAB显色,用苏木精进一步染色,将组织芯片依次放于0.1% HCL分化,梯度酒精、二甲苯脱水,中性树胶封片镜检。

    在HCC细胞质中可检测到 ANXA2 和 RACK1 染色为阳性,呈黄色和棕黄色颗粒。通过免疫组织化学(immunohistochemistry, IHC)结果中阳性细胞的百分比和阳性染色强度的组合来评估 ANXA2 和 RACK1 的表达水平。染色强度评分:无染色为0分,浅黄色染色为1分,棕黄色染色为2分,棕褐色染色为3分。根据阳性染色细胞的百分比,将染色程度分为5个等级:0分(<5%),1分(5%~25%),2分(26%~50%),3分(51%~75%)和 4分(76%~100%)。强度和范围得分的相乘被认为是免疫组织化学的总得分。基于上述标准,将具有 ANXA2 或RACK1表达的组织分为两组:低表达(0~3分)和高表达(4~12分)。

    使用 SPSS 23.0软件进行统计学分析。通过χ2检验评估ANXA2和RACK1的表达水平与临床特征之间的相关性。多因素 Cox 比例分析用于评估潜在的预后和复发因素,并计算 95%的可信度区间(CI)。使用 Kaplan-Meier 生存曲线评估 ANXA2 和 RACK1 与预后的相关性。以P<0.05 为差异具有统计学意义。

    本研究共包括100 例经病理确诊为肝细胞癌的患者。

    本研究选择了100对肝癌组织和邻近的正常组织进行IHC分析。在100例组织中,ANXA2在HCC组织中的表达(42%)明显高于邻近正常组织(11%,P<0.001),RACK1在HCC组织中的表达(38%)明显高于邻近正常组织(18%,P=0.002)。IHC结果表明,ANXA2和RACK1在HCC组织中主要定位于细胞质,染色呈棕黄或棕褐色,两者在HCC组织中的表达明显高于癌旁组织(P<0.001,P=0.002),且随着肿瘤组织学分级的增高,表达强度逐渐增加(表1图1)。

    表  1  ANXA2 和 RACK1 的表达与临床特征之间的关系 例
    临床特征ANXA2 表达水平PRACK1 表达水平P
    性别0.1980.652
     男50325032
     女810126
    年龄(岁)0.1190.754
     ≤5024242919
     >5034183319
    AFP(ng/mL)0.0270.051
     ≤40044234621
     >40014191716
    肿瘤大小(cm)0.0180.163
     ≤5248239
     >534343929
    肿瘤分化程度<0.001<0.001
     高、中分化4384110
     低分化15342128
    脉管癌栓0.0350.009
     有10151015
     无48275223
    TNM 分期<0.001<0.001
     Ⅰ~Ⅱ354336
     Ⅲ~Ⅳ23382932
    肿瘤数目0.4480.247
     单个49335329
     多个9999
    HBV 感染0.5190.899
     有46314829
     无1211149
    肝硬化0.2730.241
     有43354632
     无157166
    Child分级0.6960.422
     A53405934
     B5234
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    根据ANXA2和RACK1表达情况,分为低表达和高表达组,进一步分析 ANXA2 和 RACK1 的表达与临床病理特征之间的相关性(表1)。结果显示ANXA2 表达强度与 AFP(P=0.027)、肿瘤大小(P=0.018)、脉管癌栓(P=0.035)、肿瘤分化(P<0.001)和 TNM 分期(P<0.001)间差异具有统计学意义,与性别、年龄、肿瘤数目、HBV 感染、Child 分级和肝硬化等因素均无统计学意义(均P>0.05)。此外,RACK1 表达与肿瘤分化(P<0.001)、脉管癌栓(P=0.009)和 TNM 分期(P<0.001)间差异具有统计学意义,与其他临床病理特征之间差异均无统计学意义(均P>0.05)。进一步分析 ANXA2 和 RACK1的共表达与临床病理特征之间的关系,结果表明ANXA2/RACK1 的高表达与肿瘤分化(P<0.001)、TNM 分期(P<0.001)和脉管癌栓(P=0.035)相关。双变量Kendall检验结果显示,ANXA2和RACK1的表达水平存在显著的正相关(Z=0.419,P<0.01)。

    图  1  免疫组织化学检测ANXA2和RACK1在HCC组织和对应的癌旁组织中的表达 (IHC×400)
    A1,B1:癌旁组织;A2~A4:高、中、低分化的HCC组织中ANXA2的表达;B2~B4:高、中、低分化的HCC组织中RACK1的表达

    经Kaplan-Meier法分析,ANXA2 和 RACK1高表达组患者生存率明显降低,两者在HCC中的高表达与患者总生存率的降低相关(P<0.05,图2A)。且ANXA2-/RACK1-患者的总体生存率显著高于ANXA2+/RACK1-、ANXA2-/RACK1+和ANXA2+/RACK1+的患者(图2A)。因此,联合检测ANXA2 和 RACK1 的表达在患者预后分析中具有重要临床意义。单因素分析提示脉管癌栓(P=0.002)、肿瘤分化(P=0.015)、TNM 分期(P<0.001)、ANXA2(P<0.001)、RACK1(P<0.001)以及ANXA2/ RACK1共表达(P<0.001)与患者总体生存时间相关。多因素分析提示ANXA2(P<0.001)、RACK1(P<0.001)以及ANXA2 /RACK1 的共表达(P =0.043)是预测总体生存时间的独立预后因素。因此,ANXA2/RACK1联合表达的增加与肝细胞癌患者预后不良相关。

    ANXA2/RACK1 高表达患者累积复发率高于低表达ANXA2/RACK1患者(PANXA2<0.001,PRACK1<0.001,图2B)。提示ANXA2和RACK1促进肝细胞癌患者的复发。在 12 例早期复发患者(复发时间<12个月)中,11 例高表达 ANXA2(11/12,91.7%)和RACK1 (11/12,91.7%,表2)。与 ANXA2+/RACK1-、ANXA2-/RACK1+和ANXA2-/RACK1-患者相比,ANXA2+ /RACK1+患者总是伴随更早的复发(图2B)。单因素分析显示脉管癌栓(P=0.008)、肿瘤分化(P=0.011)、TNM 分期(P<0.001)、ANXA2(P<0.001)、RACK1(P<0.001)和 ANXA2/RACK1共表达(P<0.001,表2)与复发时间相关。多因素分析显示ANXA2(P<0.001)、RACK1(P<0.001)以及ANXA2/RACK1 的共表达(P=0.008)是预测复发时间的独立因素(表3)。 ANXA2/RACK1的共表达是预测HCC患者总体生存和复发时间的独立预后因素,且两者的联合检测可SS以更好地预测患者的生存及复发(表4)。

    表  2  肝癌患者总生存时间及复发时间的单因素分析
    变量生存时间复发时间
    HR95%CIPHR95%CIP
    性别(男性/女性)0.8660.511~1.4650.5911.1060.563~2.1700.770
    年龄(≤50岁/>50岁)0.9530.638~1.4240.8151.1510.707~1.8730.573
    肿瘤大小(≤5 cm/>5 cm)0.8240.540~1.2570.3690.8940.531~1.5070.674
    肿瘤数目(单个/多个)0.6680.398~1.1230.1280.6230.343~1.1320.120
    脉管癌栓(有/无)0.4720.296~0.7520.0020.4820.280~0.8300.008
    肝硬化(有/无)0.7790.484~1.2530.3030.7130.388~1.3100.276
    HBV感染(有/无)1.3890.863~2.2340.1761.1450.650~2.0160.639
    AFP(≤400 ng/mL/>400 ng/mL)0.8490.556~1.2970.4500.7120.430~1.1790.186
    肿瘤分化*0.6090.409~0.9080.0150.5280.324~0.8610.011
    TNM 分期(Ⅰ~Ⅱ/Ⅲ~Ⅳ)0.3850.253~0.585<0.0010.3220.189~0.548<0.001
    Child分级(A/B)1.4350.624~3.3000.3960.4810.207~1.1180.089
    ANXA2(高/低)0.1410.084~0.235<0.0010.2340.138~0.397<0.001
    RACK1(高/低)0.1710.104~0.279<0.0010.2790.164~0.475<0.001
    ANXA2/RACK1的共表达**3.2032.485~4.127<0.0012.2411.742~2.883<0.001
    *:高分化、中分化、低分化;**:全部高表达/其他
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    图  2  ANXA2和RACK1不同表达的HCC患者生存与复发情况
    A:总生存率;B:累积复发率
    表  3  肝癌患者总生存时间及复发时间的多因素分析
    变量生存时间复发时间
    HR95%CIPHR95%CIP
    脉管癌栓(有/无)0.6200.370~1.0390.0700.6750.362~1.2580.216
    肿瘤分化*1.5340.941~2.5020.0861.1510.624~2.1230.652
    TNM 分期(Ⅰ~Ⅱ/Ⅲ~Ⅳ)0.7600.455~1.2690.2940.5730.304~1.0800.085
    ANXA2(高/低)0.0450.015~0.131<0.0010.0780.026~0.238<0.001
    RACK1(高/低)0.0580.022~0.151<0.0010.1100.042~0.287<0.001
    ANXA2 /RACK1的共表达**3.3851.040~11.0150.0435.2391.553~17.6740.008
    *:高分化、中分化、低分化;**:全部高表达/其他
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    表  4  ANXA2和RACK1的表达与复发之间的关系
    复发时间ANXA2 表达RACK1的表达
    例数高表达低表达高表达率P例数高表达低表达高表达率P
    <12个月1211 191.7%<0.0011211 191.7%<0.001
    ≥12个月53183534.0%53153828.3%
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    肝细胞癌患者具有较高的发病率和高死亡率[13]。研究表明不同的细胞信号转导途径参与了HCC的细胞增殖、凋亡、分化和转移,包括Wnt/β-Catenin 途径、Ras/Raf/MAPK途径、PI3/AKT/ mTOR 途径和 JAK/STAT 途径等[14-16]。靶向治疗通过抑制HCC中的特定分子及其下游信号通路而发挥抗肿瘤作用[17]。索拉非尼在延长晚期HCC患者的寿命中起重要作用,是临床上广泛使用的代表性靶向药物,其通过阻断生长因子的酪氨酸激酶受体发挥抗肿瘤作用[18]。因此,寻找在HCC发生发展中起作用的新型基因,探寻其对预后的价值以及新的治疗靶点具有重要临床意义。本研究初步探讨ANXA2/RACK1在HCC组织中的表达水平与患者的临床病理因素之间的关系,分析两者联合检测在患者预后判断中的价值。

    ANXA2广泛分布于细胞质膜下、核内、细胞外基质及储存离子的细胞器周围,在不同物种中的结构高度保守[19]。ANXA2 结构上包含3个功能不同的区域,其中N端具有 Ser11(serine 11)、Ser25 和 Tyr23 磷酸化位点,这3个不同的位点磷酸化后发挥不同的功能,共同促进肿瘤进展[20-21]。Tyr23磷酸化后,促进STAT3入核加快乳腺癌细胞的增殖和转移,且通过与RACK1 相互作用来调节乳腺癌的多重耐药性[22-23]有趣的是,ANXA2存在HCC和肝硬化组织中,而磷酸化 ANXA2 仅在HCC组织中检测到,其潜在机制需要进一步研究[22]

    RACK1具有7个WD40 重复的螺旋桨结构,与G蛋白β亚基具有高度同源性,可作为支架蛋白发挥作用,与激酶、受体和病毒相互结合,参与各种细胞生物学应答[24]。RACK1与 FAK 和三维纤维胶原蛋白基质中的细丝蛋白、波形蛋白相互作用,促进肿瘤血管生成[25]。进一步研究表明RACK1 作为介导细胞相互作用的信号桥,通过与Src相互作用促进ANXA2的磷酸化,即ANXA2 酪氨酸磷酸化由Src介导以RACK1依赖的方式进行,进而促进耐药性乳腺癌细胞的侵袭和迁移[26-27]

    本研究通过免疫组织化学和蛋白质印迹分析,发现 ANXA2 和 RACK1 在肝细胞癌中过表达,多因素 Cox 回归分析表明ANXA2、RACK1 和 ANXA2/RACK1 高表达是预测患者总体生存时间的独立预后因素,ANXA2、RACK1 和 ANXA2/RACK1 高表达有助于对复发时间的预测。Kaplan-Meier 生存分析结果显示,ANXA2-/RACK1-患者的总体生存率显著高于ANXA2 +/RACK1-、ANXA2-/RACK1+和ANXA2+/RACK1 +的患者,与ANXA2+/RACK1-、ANXA2-/RACK1+和ANXA2-/Rack1-患者相比,ANXA2+/RACK1+患者易于更早期复发。

    综上所述,本研究结果提示ANXA2/RACK1与HCC患者预后不良和早期复发密切相关,是HCC基因治疗潜在的靶点。但是ANXA2协同RACK1参与HCC发生发展的具体分子机制仍需要在HCC细胞系中进行深入研究。

  • 图  1   免疫组织化学检测ANXA2和RACK1在HCC组织和对应的癌旁组织中的表达 (IHC×400)

    A1,B1:癌旁组织;A2~A4:高、中、低分化的HCC组织中ANXA2的表达;B2~B4:高、中、低分化的HCC组织中RACK1的表达

    图  2   ANXA2和RACK1不同表达的HCC患者生存与复发情况

    A:总生存率;B:累积复发率

    表  1   ANXA2 和 RACK1 的表达与临床特征之间的关系 例

    临床特征ANXA2 表达水平PRACK1 表达水平P
    性别0.1980.652
     男50325032
     女810126
    年龄(岁)0.1190.754
     ≤5024242919
     >5034183319
    AFP(ng/mL)0.0270.051
     ≤40044234621
     >40014191716
    肿瘤大小(cm)0.0180.163
     ≤5248239
     >534343929
    肿瘤分化程度<0.001<0.001
     高、中分化4384110
     低分化15342128
    脉管癌栓0.0350.009
     有10151015
     无48275223
    TNM 分期<0.001<0.001
     Ⅰ~Ⅱ354336
     Ⅲ~Ⅳ23382932
    肿瘤数目0.4480.247
     单个49335329
     多个9999
    HBV 感染0.5190.899
     有46314829
     无1211149
    肝硬化0.2730.241
     有43354632
     无157166
    Child分级0.6960.422
     A53405934
     B5234
    下载: 导出CSV

    表  2   肝癌患者总生存时间及复发时间的单因素分析

    变量生存时间复发时间
    HR95%CIPHR95%CIP
    性别(男性/女性)0.8660.511~1.4650.5911.1060.563~2.1700.770
    年龄(≤50岁/>50岁)0.9530.638~1.4240.8151.1510.707~1.8730.573
    肿瘤大小(≤5 cm/>5 cm)0.8240.540~1.2570.3690.8940.531~1.5070.674
    肿瘤数目(单个/多个)0.6680.398~1.1230.1280.6230.343~1.1320.120
    脉管癌栓(有/无)0.4720.296~0.7520.0020.4820.280~0.8300.008
    肝硬化(有/无)0.7790.484~1.2530.3030.7130.388~1.3100.276
    HBV感染(有/无)1.3890.863~2.2340.1761.1450.650~2.0160.639
    AFP(≤400 ng/mL/>400 ng/mL)0.8490.556~1.2970.4500.7120.430~1.1790.186
    肿瘤分化*0.6090.409~0.9080.0150.5280.324~0.8610.011
    TNM 分期(Ⅰ~Ⅱ/Ⅲ~Ⅳ)0.3850.253~0.585<0.0010.3220.189~0.548<0.001
    Child分级(A/B)1.4350.624~3.3000.3960.4810.207~1.1180.089
    ANXA2(高/低)0.1410.084~0.235<0.0010.2340.138~0.397<0.001
    RACK1(高/低)0.1710.104~0.279<0.0010.2790.164~0.475<0.001
    ANXA2/RACK1的共表达**3.2032.485~4.127<0.0012.2411.742~2.883<0.001
    *:高分化、中分化、低分化;**:全部高表达/其他
    下载: 导出CSV

    表  3   肝癌患者总生存时间及复发时间的多因素分析

    变量生存时间复发时间
    HR95%CIPHR95%CIP
    脉管癌栓(有/无)0.6200.370~1.0390.0700.6750.362~1.2580.216
    肿瘤分化*1.5340.941~2.5020.0861.1510.624~2.1230.652
    TNM 分期(Ⅰ~Ⅱ/Ⅲ~Ⅳ)0.7600.455~1.2690.2940.5730.304~1.0800.085
    ANXA2(高/低)0.0450.015~0.131<0.0010.0780.026~0.238<0.001
    RACK1(高/低)0.0580.022~0.151<0.0010.1100.042~0.287<0.001
    ANXA2 /RACK1的共表达**3.3851.040~11.0150.0435.2391.553~17.6740.008
    *:高分化、中分化、低分化;**:全部高表达/其他
    下载: 导出CSV

    表  4   ANXA2和RACK1的表达与复发之间的关系

    复发时间ANXA2 表达RACK1的表达
    例数高表达低表达高表达率P例数高表达低表达高表达率P
    <12个月1211 191.7%<0.0011211 191.7%<0.001
    ≥12个月53183534.0%53153828.3%
    下载: 导出CSV
  • [1]

    Qiu H, Cao S, Xu R. Cancer incidence, mortality, and burden in China: a time-trend analysis and comparison with the United States and United Kingdom based on the global epidemiological data released in 2020[J]. Cancer Commun (Lond), 2021, 41(10):1037-1048.

    [2]

    Bo M, Mattia E, Baboci L, et al. New insights into the pharmacological, immunological, and CAR-T-cell approaches in the treatment of hepatocellular carcinoma[J]. Drug Resist Updat, 2020, 51:100702.

    [3]

    Rebouissou S, Nault JC. Advances in molecular classification and precision oncology in hepatocellular carcinoma[J]. J Hepatol, 2020,72:215-229.

    [4]

    Gerke V, Moss SE. Annexins: from structure to function[J]. Physiol Rev, 2002, 82(2):331-371. DOI: 10.1152/physrev.00030.2001

    [5]

    Sharma MC, Sharma M. The role of annexin II in angiogenesis and tumor progression: a potential therapeutic target[J]. Curr Pharm Des, 2007, 13(35):3568-3575. DOI: 10.2174/138161207782794167

    [6]

    Shi H, Xiao L, Duan W, et al. ANXA2 enhances the progression of hepatocellular carcinoma via remodeling the cell motility associated structures[J]. Micron, 2016, 85:26-33. DOI: 10.1016/j.micron.2016.03.008

    [7]

    Ling Q, Jacovina AT, Deora A, et al. Annexin II regulates fibrin homeostasis and neoangiogenesis in vivo[J]. J Clin Invest, 2004, 113(1):38-48. DOI: 10.1172/JCI19684

    [8]

    Zou YH, Li XD, Zhang QH, et al. RACK1 Silencing Induces Cell Apoptosisand Inhibits Cell Proliferation in Hepatocellular Carcinoma MHCC97-H Cells[J]. Pathol Oncol Res, 2018, 24(1):101-107. DOI: 10.1007/s12253-017-0214-6

    [9]

    Adams DR, Ron D, Kiely PA. RACK1, a multifaceted scaffolding protein: structure and function[J]. Cell Commun Signal, 2011, 9:22. DOI: 10.1186/1478-811X-9-22

    [10]

    Wang F, Osawa T, Tsuchida R, et al. Downregulation of receptor for activated C-kinase 1 (RACK1) suppresses tumor growth by inhibiting tumor cell proliferation and tumor-associated angiogenesis[J]. Cancer Sci, 2011, 102(11):2007-2013. DOI: 10.1111/j.1349-7006.2011.02065.x

    [11]

    Fan Y, Si W, Ji W, et al. Rack1 mediates tyrosine phosphorylation of Anxa2 bySrc and promotes invasion and metastasis in drug-resistant breast cancer cells[J]. Breast Cancer Res, 2019, 21(1):66. DOI: 10.1186/s13058-019-1147-7

    [12]

    Ministry of Health of the People's Republic of China. Updated standards for the diagnosis and treatment of primary liver cancer[J]. Zhonghua Gan Zang Bing Za Zhi, 2012, 20(6):419-426.

    [13]

    Berger DMS, Wassenberg RM, Jóźwiak K, et al. Inter-observer variation in the histopathology reports of head and neck melanoma; a comparison between the seventh and eighth edition of the AJCC staging system[J]. Eur J Sur Oncol, 2019, 45(2):235-241. DOI: 10.1016/j.ejso.2018.10.529

    [14]

    Pahwa A, Beckett K, Channual S, et al. Efficacy of the American Association for the Study of Liver Disease and Barcelona criteria for the diagnosis of hepatocellular carcinoma[J]. Abdom Imaging, 2014, 39(4):753-760. DOI: 10.1007/s00261-014-0118-9

    [15]

    Zheng Y, Liao N, Wu Y, et al. High expression of B7H2 or B7H3 is associated with poor prognosis in hepatocellular carcinoma[J]. Mol Med Rep, 2019, 19(5):4315-4325.

    [16]

    Aravalli RN, Steer CJ, Cressman EN. Molecular mechanisms of hepatocellular carcinoma[J]. Hepatology, 2008, 48(6):2047-2063. DOI: 10.1002/hep.22580

    [17]

    Kudo M. Signaling pathway and molecular-targeted therapy for hepatocellularcarcinoma[J]. Dig Dis, 2011, 29(3):289-302. DOI: 10.1159/000327562

    [18]

    Fang L, Gao C, Bai R X, et al. Overexpressed sFRP3 exerts an inhibitory effect on hepatocellular carcinoma via inactivation of the Wnt/β-catenin signaling pathway[J]. Cancer Gene Ther, 2021, 28(7-8):875-891. DOI: 10.1038/s41417-020-0201-z

    [19]

    Alqahtani A, Khan Z, Alloghbi A, et al. Hepatocellular carcinoma: molecular mechanisms and targeted therapies[J]. Medicina (Kaunas), 2019, 55(9):E526.

    [20]

    Chen C, Wang G. Mechanisms of hepatocellular carcinoma and challenges and opportunities for molecular targeted therapy[J]. World J Hepatol, 2015, 7(15):1964-1970. DOI: 10.4254/wjh.v7.i15.1964

    [21]

    Wang T, Wang Z, Niu R, et al. Crucial role of Anxa2 in cancer progression: highlights on its novel regulatory mechanism[J]. Cancer Biol Med, 2019, 16(4):671-687.

    [22]

    Hajjar KA, Krishnan S. AnnexinⅡ: a mediator of the plasmin/plasminogen activator system[J]. Trends Cardiovasc Med, 1999, 9(5): 128-138.

    [23]

    Mohammad HS, Kurokohchi K, Yoneyama H, et al. Annexin A2 expression and phosphorylation are up-regulated in hepatocellular carcinoma[J]. Int J Oncol, 2008, 33(6):1157-1163.

    [24]

    Yuan J, Yang Y, Gao Z, et al. Tyr23 phosphorylation of Anxa2 enhances S TAT3 activation and promotes proliferation and invasion of breast cancer cells[J]. Breast Cancer Res Treat, 2017, 164(2):327-340. DOI: 10.1007/s10549-017-4271-z

    [25]

    Yang Y, Wu N, Wang Z, et al. Rack1 mediates the interaction of P-glycoprotein with Anxa2 and regulates migration and invasion of multidrug-resistant breast cancer cells[J]. Int J Mol Sci, 2016,17(10):1718.

    [26]

    Chang BY, Conroy KB, Machleder EM, et al. RACK1, a receptor for activated C kinase and a homolog of the beta subunit of G proteins, inhibits activity of srctyrosine kinases and growth of NIH 3T3 cells[J]. Mol Cell Biol, 1998, 18(6):3245-3256. DOI: 10.1128/MCB.18.6.3245

    [27]

    Duff D, Long A. Roles for RACK1 in cancer cell migration and invasion[J]. Cell Signal, 2017, 35:250-255. DOI: 10.1016/j.cellsig.2017.03.005

  • 期刊类型引用(6)

    1. 井丽君,张敏,魏雪,唐玉彬. 肝细胞肝癌中DDX24、TRIP12表达与上皮间质转化及临床预后的关系. 疑难病杂志. 2024(06): 646-652 . 百度学术
    2. 张琪,于永生,张树敏,刘庆雨,张庆,李娜. ANXA2基因表达量与猪肌肉氨基酸、脂肪酸含量的关联分析. 家畜生态学报. 2024(11): 14-19 . 百度学术
    3. 刘永昌,郝志强,赵玉成,张启文. 肝细胞肝癌组织中TFAM、PDLIM1表达及与患者临床病理特征和预后的关系. 山东医药. 2023(10): 6-10 . 百度学术
    4. 陈佳,马柏强. 急性胰腺炎患儿血清膜联蛋白A2表达水平与疾病严重程度及预后的关系. 中国妇幼保健. 2023(17): 3254-3258 . 百度学术
    5. 宋奇锋,高良辉,林师佈,张译中,沈立. 长链非编码RNA OTUD6B-AS1、微RNA-365a-3p在肝癌中表达与临床病理特征及预后的关系. 安徽医药. 2023(11): 2150-2154 . 百度学术
    6. 于鹏,段绍斌. 基于术前谷草转氨酶构建预测早期胃癌患者淋巴结转移的列线图模型. 兰州大学学报(医学版). 2023(10): 46-51 . 百度学术

    其他类型引用(0)

图(2)  /  表(4)
计量
  • 文章访问数:  217
  • HTML全文浏览量:  43
  • PDF下载量:  49
  • 被引次数: 6
出版历程
  • 收稿日期:  2021-11-30
  • 录用日期:  2022-01-20
  • 网络出版日期:  2022-03-28
  • 刊出日期:  2022-04-11

目录

/

返回文章
返回